Ir al contenido

Regulación de la transcripción en cáncer

De Wikipedia, la enciclopedia libre

Generalmente, en la progresión al cáncer, se silencian o activan cientos de genes. Aunque el silenciamiento de algunos genes en los cánceres ocurre por mutación, una gran proporción del silenciamiento de genes cancerígenos es el resultado de una alteración de la metilación del ADN (Metilación del ADN en el cáncer). La metilación del ADN que causa el silenciamiento en el cáncer ocurre típicamente en múltiples sitios CpG en las islas CpG que están presentes en los promotores de genes que codifican proteínas.

Las expresiones alteradas de microARN también silencian o activan muchos genes en progresión al cáncer (ver microARN en cáncer). La expresión de microARN alterada ocurre a través de hiper/hipometilación de sitios CpG en islas CpG en promotores que controlan la transcripción de microARN.

El silenciamiento de los genes de reparación del ADN mediante la metilación de las islas CpG en sus promotores parece ser especialmente importante en la progresión al cáncer (metilación de los genes de reparación del ADN en el cáncer).

Islas CpG en promotores

[editar]

En los seres humanos, aproximadamente el 70% de los promotores ubicados cerca del sitio de inicio de la transcripción de un gen (promotores proximales) contienen una isla CpG.[1][2]​ Las islas CpG tienen generalmente de 200 a 2000 pares de bases de largo, tienen un contenido de pares de bases C:G> 50% y tienen regiones de ADN donde un nucleótido de citosina es seguido por un nucleótido de guanina y esto ocurre con frecuencia en la secuencia lineal de bases a lo largo de su dirección 5′ → 3′.[3][4]

Los genes también pueden tener promotores distantes (promotores distales) y estos con frecuencia también contienen islas CpG. Un ejemplo es el promotor del gen de reparación de ADN ERCC1, donde el promotor que contiene la isla CpG se encuentra a unos 5.400 nucleótidos cadena arriba de la región codificante del gen ERCC1.[5]​ Las islas CpG también se encuentran con frecuencia en los promotores de ARN no codificantes funcionales, como los microARN.[6]

Silenciamiento de la transcripción debido a la metilación de islas CpG

[editar]

En los seres humanos, la metilación del ADN se produce en la posición 5' del anillo de pirimidina de los residuos de citosina dentro de los sitios CpG para formar 5-metilcitosinas. La presencia de múltiples sitios CpG metilados en islas CpG de promotores provoca una inhibición estable (silenciamiento) de genes.[7]​ El silenciamiento de la transcripción de un gen puede iniciarse mediante otros mecanismos, pero esto a menudo es seguido por la metilación de los sitios CpG en la isla CpG del promotor para provocar el silenciamiento estable del gen.

Silenciamiento/activación de la transcripción en cánceres

[editar]

En los cánceres, la pérdida de expresión de genes se produce aproximadamente 10 veces más frecuentemente por silenciamiento de la transcripción (causado por hipermetilación del promotor de islas CpG) que por mutaciones. En un cáncer colorrectal generalmente hay alrededor de 3 a 6 mutaciones de conductor y 33 a 66 mutaciones de autoestopista o pasajero.[8]​ Por el contrario, en los tumores de colon en comparación con la mucosa colónica adyacente de apariencia normal, hay alrededor de 600 a 800 islas CpG muy metiladas en los promotores de genes en los tumores, mientras que estas islas CpG no están metiladas en la mucosa adyacente.[9][10][11]

Utilizando el análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes, 569 de 938 conjuntos de genes se hipermetilaron y 369 se hipometilaron en cánceres. La hipometilación de islas CpG en los promotores da como resultado un aumento de la transcripción de los genes o conjuntos de genes afectados.[11]

Un estudio[12]​ enumeró 147 genes específicos con promotores hipermetilados asociados al cáncer de colon y 27 con promotores hipometilados, junto con la frecuencia con la que se encontraron estas hiper / hipometilaciones en los cánceres de colon. Al menos 10 de esos genes tenían promotores hipermetilados en casi el 100% de los cánceres de colon. También indicaron 11 microARN cuyos promotores estaban hipermetilados en cánceres de colon en frecuencias entre el 50% y el 100% de los cánceres. Los microARN (miARN) son pequeños ARN endógenos que se emparejan con secuencias en los ARN mensajeros para dirigir la represión postranscripcional. En promedio, cada microARN reprime o inhibe la expresión transcripcional de varios cientos de genes diana. Por lo tanto, los microARN con promotores hipermetilados pueden permitir una transcripción mejorada de cientos a miles de genes en un cáncer.[13]

Inhibición y activación de la transcripción por microARN nucleares

[editar]

Durante más de 20 años, se ha sabido que los microARN actúan en el citoplasma para degradar la expresión transcripcional de los ARN mensajeros de genes diana específicos (microARN). Sin embargo, se demostró que hasta el 75% de los microARN pueden ser transportados de regreso al núcleo de las células.[14]​ También que algunos microARN nucleares median la activación del gen transcripcional o la inhibición del gen transcripcional.[15]

Genes de reparación de ADN con promotores hiper/hipometilados en cánceres

[editar]

Los genes de reparación del ADN se reprimen con frecuencia en los cánceres debido a la hipermetilación de las islas CpG dentro de sus promotores. En los carcinomas de células escamosas de cabeza y cuello, al menos 15 genes de reparación del ADN tienen con frecuencia promotores hipermetilados; estos genes son XRCC1, MLH3, PMS1, RAD51B, XRCC3, RAD54B, BRCA1, SHFM1, GEN1, FANCE, FAAP20, SPRTN, SETMAR, HUS1 y PER1.[16]​ Aproximadamente diecisiete tipos de cáncer son frecuentemente deficientes en uno o más genes de reparación del ADN debido a la hipermetilación de sus promotores.[17]​ Como se resume en un artículo de revisión, la hipermetilación del promotor del gen de reparación del ADN MGMT ocurre en el 93% de los cánceres de vejiga, el 88% de los cánceres de estómago, el 74% de los cánceres de tiroides, el 40 - 90% de los cánceres colorrectales y el 50% de los cánceres de cerebro. La hipermetilación del promotor LIG4 ocurre en el 82% de los cánceres colorrectales. La hipermetilación del promotor de NEIL1 ocurre en el 62% de los cánceres de cabeza y cuello y en el 42% de los carcinomas pulmonares no microcítico; la hipermetilación del promotor de ATM ocurre en el 47% de los cánceres de pulmón de células no pequeñas; la hipermetilación del promotor de MLH1 ocurre en el 48% de los carcinomas de células escamosas; y la hipermetilación del promotor de FANCB ocurre en el 46% de los cánceres de cabeza y cuello. Por otro lado, los promotores de dos genes, PARP1 y FEN1, se hipometilaron y estos genes se sobreexpresaron en numerosos cánceres. PARP1 y FEN1 son genes esenciales en la unión de extremos mediada por microhomología de la vía de reparación del ADN mutagénica y propensa a errores. Si esta vía se sobreexpresa, el exceso de mutaciones que causa puede provocar cáncer. PARP1 está sobreexpresado en leucemias activadas por tirosina quinasa,[18]​ en neuroblastoma,[19]​ en testiculares y otros tumores de células germinales,[20]​ y en sarcoma de Ewing,[21]FEN1 está sobreexpresado en la mayoría de los cánceres de la mama,[22]​ próstata,[23]​ estómago,[24][25]​ neuroblastomas,[26]​ páncreas[27]​ y pulmón.[28]

El daño al ADN parece ser la principal causa subyacente del cáncer.[29][30]​ Si la reparación precisa del ADN es deficiente, los daños en el ADN tienden a acumularse. Tal daño excesivo del ADN puede aumentar los errores mutacionales durante la replicación del ADN debido a la síntesis de translesión propensa a errores. El daño excesivo del ADN también puede aumentar las alteraciones epigenéticas debido a errores durante la reparación del ADN. Tales mutaciones y alteraciones epigenéticas pueden dar lugar a cáncer (ver neoplasias malignas). Por tanto, la hiper/hipometilación de islas CpG en los promotores de los genes de reparación del ADN es probablemente fundamental para la progresión al cáncer.[31][32]

Véase también

[editar]

Referencias

[editar]
  1. Saxonov, Serge; Berg, Paul; Brutlag, Douglas L. (31 de enero de 2006). «A genome-wide analysis of CpG dinucleotides in the human genome distinguishes two distinct classes of promoters». Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 103 (5): 1412-1417. ISSN 0027-8424. PMC 1345710. PMID 16432200. doi:10.1073/pnas.0510310103. 
  2. Deaton, Aimée M.; Bird, Adrian (15 de mayo de 2011). «CpG islands and the regulation of transcription». Genes & Development 25 (10): 1010-1022. ISSN 1549-5477. PMC 3093116. PMID 21576262. doi:10.1101/gad.2037511. 
  3. Okugawa, Yoshinaga; Grady, William M.; Goel, Ajay (2015-10). «Epigenetic Alterations in Colorectal Cancer: Emerging Biomarkers». Gastroenterology 149 (5): 1204-1225.e12. ISSN 0016-5085. PMC 4589488. PMID 26216839. doi:10.1053/j.gastro.2015.07.011. 
  4. Gardiner-Garden, M.; Frommer, M. (20 de julio de 1987). «CpG islands in vertebrate genomes». Journal of Molecular Biology 196 (2): 261-282. ISSN 0022-2836. PMID 3656447. doi:10.1016/0022-2836(87)90689-9. 
  5. Chen, Hua-Yun; Shao, Cui-Jie; Chen, Fu-Rong; Kwan, Aij-Lie; Chen, Zhong-Ping (15 de abril de 2010). «Role of ERCC1 promoter hypermethylation in drug resistance to cisplatin in human gliomas». International Journal of Cancer 126 (8): 1944-1954. ISSN 1097-0215. PMID 19626585. doi:10.1002/ijc.24772. 
  6. Kaur, Sippy; Lotsari-Salomaa, Johanna E.; Seppänen-Kaijansinkko, Riitta; Peltomäki, Päivi (2016). «MicroRNA Methylation in Colorectal Cancer». Advances in Experimental Medicine and Biology 937: 109-122. ISSN 0065-2598. PMID 27573897. doi:10.1007/978-3-319-42059-2_6. 
  7. Bird, Adrian (1 de enero de 2002). «DNA methylation patterns and epigenetic memory». Genes & Development 16 (1): 6-21. ISSN 0890-9369. PMID 11782440. doi:10.1101/gad.947102. 
  8. Vogelstein, Bert; Papadopoulos, Nickolas; Velculescu, Victor E.; Zhou, Shibin; Diaz, Luis A.; Kinzler, Kenneth W. (29 de marzo de 2013). «Cancer genome landscapes». Science (New York, N.Y.) 339 (6127): 1546-1558. ISSN 1095-9203. PMC 3749880. PMID 23539594. doi:10.1126/science.1235122. 
  9. Illingworth, Robert S.; Gruenewald-Schneider, Ulrike; Webb, Shaun; Kerr, Alastair R. W.; James, Keith D.; Turner, Daniel J.; Smith, Colin; Harrison, David J. et al. (23 de septiembre de 2010). «Orphan CpG Islands Identify Numerous Conserved Promoters in the Mammalian Genome». PLoS Genetics 6 (9). ISSN 1553-7390. PMC 2944787. PMID 20885785. doi:10.1371/journal.pgen.1001134. 
  10. Wei, Jiufeng; Li, Guodong; Dang, Shuwei; Zhou, Yuhui; Zeng, Kai; Liu, Ming (2016). «Discovery and Validation of Hypermethylated Markers for Colorectal Cancer». Disease Markers 2016. ISSN 0278-0240. PMC 4963574. PMID 27493446. doi:10.1155/2016/2192853. 
  11. a b Beggs, Andrew D; Jones, Angela; El-Bahwary, Mona; Abulafi, Muti; Hodgson, Shirley V; Tomlinson, Ian PM (2013-4). «Whole-genome methylation analysis of benign and malignant colorectal tumours». The Journal of Pathology 229 (5): 697-704. ISSN 0022-3417. PMC 3619233. PMID 23096130. doi:10.1002/path.4132. 
  12. Schnekenburger, Michael; Diederich, Marc (2012-03). «Epigenetics Offer New Horizons for Colorectal Cancer Prevention». Current Colorectal Cancer Reports 8 (1): 66-81. ISSN 1556-3790. PMC 3277709. PMID 22389639. doi:10.1007/s11888-011-0116-z. 
  13. Friedman, Robin C.; Farh, Kyle Kai-How; Burge, Christopher B.; Bartel, David P. (2009-01). «Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs». Genome Research 19 (1): 92-105. ISSN 1088-9051. PMC 2612969. PMID 18955434. doi:10.1101/gr.082701.108. 
  14. Gagnon, Keith T.; Li, Liande; Chu, Yongjun; Janowski, Bethany A.; Corey, David R. (16 de enero de 2014). «RNAi factors are present and active in human cell nuclei». Cell Reports 6 (1): 211-221. ISSN 2211-1247. PMC 3916906. PMID 24388755. doi:10.1016/j.celrep.2013.12.013. 
  15. Catalanotto, Caterina; Cogoni, Carlo; Zardo, Giuseppe (13 de octubre de 2016). «MicroRNA in Control of Gene Expression: An Overview of Nuclear Functions». International Journal of Molecular Sciences 17 (10). ISSN 1422-0067. PMC 5085744. PMID 27754357. doi:10.3390/ijms17101712. 
  16. Rieke, Damian T.; Ochsenreither, Sebastian; Klinghammer, Konrad; Seiwert, Tanguy Y.; Klauschen, Frederick; Tinhofer, Inge; Keilholz, Ulrich (23 de septiembre de 2016). «Methylation of RAD51B, XRCC3 and other homologous recombination genes is associated with expression of immune checkpoints and an inflammatory signature in squamous cell carcinoma of the head and neck, lung and cervix». Oncotarget 7 (46): 75379-75393. ISSN 1949-2553. PMC 5342748. PMID 27683114. doi:10.18632/oncotarget.12211. 
  17. Jin, Bilian; Robertson, Keith D. (2013). «DNA methyltransferases, DNA damage repair, and cancer». Advances in Experimental Medicine and Biology 754: 3-29. ISSN 0065-2598. PMC 3707278. PMID 22956494. doi:10.1007/978-1-4419-9967-2_1. 
  18. Muvarak, Nidal; Kelley, Shannon; Robert, Carine; Baer, Maria R.; Perrotti, Danilo; Gambacorti-Passerini, Carlo; Civin, Curt; Scheibner, Kara et al. (2015-04). «c-MYC Generates Repair Errors via Increased Transcription of Alternative-NHEJ Factors, LIG3 and PARP1, in Tyrosine Kinase-Activated Leukemias». Molecular cancer research: MCR 13 (4): 699-712. ISSN 1557-3125. PMC 4398615. PMID 25828893. doi:10.1158/1541-7786.MCR-14-0422. 
  19. Newman, Erika A.; Lu, Fujia; Bashllari, Daniela; Wang, Li; Opipari, Anthony W.; Castle, Valerie P. (2015-03). «Alternative NHEJ Pathway Components Are Therapeutic Targets in High-Risk Neuroblastoma». Molecular cancer research: MCR 13 (3): 470-482. ISSN 1557-3125. PMID 25563294. doi:10.1158/1541-7786.MCR-14-0337. 
  20. Mego, Michal; Cierna, Zuzana; Svetlovska, Daniela; Macak, Dusan; Machalekova, Katarina; Miskovska, Viera; Chovanec, Michal; Usakova, Vanda et al. (2013-07). «PARP expression in germ cell tumours». Journal of Clinical Pathology 66 (7): 607-612. ISSN 1472-4146. PMID 23486608. doi:10.1136/jclinpath-2012-201088. 
  21. Newman, Robert E.; Soldatenkov, Viatcheslav A.; Dritschilo, Anatoly; Notario, Vicente (2002-05-XX). «Poly(ADP-ribose) polymerase turnover alterations do not contribute to PARP overexpression in Ewing's sarcoma cells». Oncology Reports 9 (3): 529-532. ISSN 1021-335X. PMID 11956622. 
  22. Singh, Purnima; Yang, Ming; Dai, Huifang; Yu, Dianke; Huang, Qin; Tan, Wen; Kernstine, Kemp; Lin, Dongxin et al. (2008-11). «Over-expression and hypomethylation of flap endonuclease 1 gene in breast and other cancers». Molecular cancer research : MCR 6 (11): 1710-1717. ISSN 1541-7786. PMC 2948671. PMID 19010819. doi:10.1158/1541-7786.MCR-08-0269. 
  23. Lam, John S.; Seligson, David B.; Yu, Hong; Li, Ai; Eeva, Mervi; Pantuck, Allan J.; Zeng, Gang; Horvath, Steve et al. (2006-08). «Flap endonuclease 1 is overexpressed in prostate cancer and is associated with a high Gleason score». BJU international 98 (2): 445-451. ISSN 1464-4096. PMID 16879693. doi:10.1111/j.1464-410X.2006.06224.x. 
  24. Kim, Jeong-Min; Sohn, Ho-Yong; Yoon, Sun Young; Oh, Jung-Hwa; Yang, Jin Ok; Kim, Joo Heon; Song, Kyu Sang; Rho, Seung-Moo et al. (15 de enero de 2005). «Identification of gastric cancer-related genes using a cDNA microarray containing novel expressed sequence tags expressed in gastric cancer cells». Clinical Cancer Research: An Official Journal of the American Association for Cancer Research 11 (2 Pt 1): 473-482. ISSN 1078-0432. PMID 15701830. 
  25. Wang, Kejia; Xie, Chunhong; Chen, Daorong (2014-05). «Flap endonuclease 1 is a promising candidate biomarker in gastric cancer and is involved in cell proliferation and apoptosis». International Journal of Molecular Medicine 33 (5): 1268-1274. ISSN 1791-244X. PMID 24590400. doi:10.3892/ijmm.2014.1682. 
  26. Krause, Alexander; Combaret, Valérie; Iacono, Isabelle; Lacroix, Bruno; Compagnon, Christelle; Bergeron, Christophe; Valsesia-Wittmann, Sandrine; Leissner, Philippe et al. (8 de julio de 2005). «Genome-wide analysis of gene expression in neuroblastomas detected by mass screening». Cancer Letters 225 (1): 111-120. ISSN 0304-3835. PMID 15922863. doi:10.1016/j.canlet.2004.10.035. 
  27. Iacobuzio-Donahue, Christine A.; Maitra, Anirban; Olsen, Mari; Lowe, Anson W.; Van Heek, N. Tjarda; Rosty, Christophe; Walter, Kim; Sato, Norihiro et al. (2003-4). «Exploration of Global Gene Expression Patterns in Pancreatic Adenocarcinoma Using cDNA Microarrays». The American Journal of Pathology 162 (4): 1151-1162. ISSN 0002-9440. PMC 1851213. PMID 12651607. 
  28. Nikolova, Teodora; Christmann, Markus; Kaina, Bernd (2009-07). «FEN1 is overexpressed in testis, lung and brain tumors». Anticancer Research 29 (7): 2453-2459. ISSN 1791-7530. PMID 19596913. 
  29. Kastan, Michael B. (2008-04). «DNA damage responses: mechanisms and roles in human disease: 2007 G.H.A. Clowes Memorial Award Lecture». Molecular cancer research: MCR 6 (4): 517-524. ISSN 1541-7786. PMID 18403632. doi:10.1158/1541-7786.MCR-08-0020. 
  30. Bernstein, C; Prasad, AR; Nfonsam, V; Bernstein, H. (2013). «Chapter 16: DNA Damage, DNA Repair and Cancer». En Chen, Clark, ed. New Research Directions in DNA Repair. Rijeka. p. 413. ISBN 978-953-51-1114-6. 
  31. O'Hagan, Heather M.; Mohammad, Helai P.; Baylin, Stephen B. (15 de agosto de 2008). «Double Strand Breaks Can Initiate Gene Silencing and SIRT1-Dependent Onset of DNA Methylation in an Exogenous Promoter CpG Island». PLoS Genetics 4 (8). ISSN 1553-7390. PMC 2491723. PMID 18704159. doi:10.1371/journal.pgen.1000155. 
  32. Cuozzo, Concetta; Porcellini, Antonio; Angrisano, Tiziana; Morano, Annalisa; Lee, Bongyong; Pardo, Alba Di; Messina, Samantha; Iuliano, Rodolfo et al. (2007-7). «DNA Damage, Homology-Directed Repair, and DNA Methylation». PLoS Genetics 3 (7). ISSN 1553-7390. PMC 1913100. PMID 17616978. doi:10.1371/journal.pgen.0030110.